|
А.Н. Пампура, А.И. Хавкин, Е.С. Киселева
Механизмы развития пищевой аллергии вызывают большой интерес исследователей.
При этом остается до конца не выясненным, почему в норме не возникает активный
иммунный ответ против множества пищевых антигенов, ежедневно поступающих в наш
организм?
Однозначного ответа на этот вопрос сегодня нет. Отсутствие иммунного ответа к
пищевым антигенам может возникать при невозможности их доступа к иммунной
системе через кишечную стенку: при разрушении белка пищеварительными ферментами,
невозможности преодоления антигенами кишечного эпителия и слизистого слоя, что
предупреждает контакт молекул с антигенпредставляющими клетками. Вместе с тем
соответствующие антигены могут быть обнаружены в сыворотке через несколько минут
после приема пищи [ Swarbrick ET , 1986; Husby S , et al . 1986; Husby S , Foged
N , Host A , et al ., 1987]. Кроме того, физический барьер может препятствовать
проникновению бактерий и тем самым ослаблять их адъювантную активность.
Адъюванты (напр. ЛПС) могут быть удалены при прохождении через печень. В
значительной мере толерантность к пищевым антигенам обусловлена особенностями
местного иммунного ответа.
Основная направленность местного иммунитета состоит в подавлении иммунного
ответа, которая формируется при участии 3 уникальных феноменов: оральной
толерантности, контролируемого хронического воспаления, или так называемого
физиологического воспаления, и местной секреции IgA. Нарушение этих механизмов
ведет к манифестации симптомов пищевой аллергии. Под оральной толерантностью
понимают состояние активной иммунологической ареактивности к антигену, с которым
организм ранее контактировал при энтеральном пути введения [Strobel S, Mowat AM.
1998]. Последствиями нарушения оральной толерантности к пищевым аллергенам может
явиться развитие не только пищевой аллергии, но и целиакии, и других энтеропатий
[Mowat AMcI, Weiner HL., 1998]. Феномен оральной толерантности распространяется
не только на реакции немедленной гиперчувствительности (I тип реакций по
классификации Gell и Coombs), но и на другие типы иммунопатологических реакций.
В этой связи экспериментальные модели и интерпретация полученных данных зачастую
неоднозначны, а попытки обоснования клинического использования данного феномена
– чрезвычайно аккуратны. Концепция оральной толерантности исторически
основывалась на многочисленных экспериментальных данных, полученных в опытах на
грызунах [Brandtzaeg, P. 1996].
Процесс формирования оральной толерантности возникает после первого контакта
антигена с кишечник–ассоциированной лимфоидной тканью (GALT). Антигены могут
напрямую взаимодействовать с кишечник–ассоциированной лимфоидной тканью или
осуществлять воздействие на иммунную систему после абсорбции. Хотя пищевые
антигены расщепляются к моменту попадания в тонкий кишечник, в ряде исследований
было продемонстрировано, что расщепление только частично и, более того,
некоторое количество антигенов абсорбируются в неизмененном виде. Причем
абсорбция интактных антигенов особенно значима при приеме больших доз антигена [
Bruce , M . G ., and Ferguson , A . 1986].
Оральная толерантность представляет собой активный иммунологический процесс,
обусловленный различными иммунологическими механизмами. В этой связи особого
внимания заслуживают факторы, влияющие на развитие оральной толерантности [
Mayer , L ., K . Sperber , L . Chan , et al ., 2001]: – генетические, – возраст,
доза, начало и длительность постнатального питания, – антигенная структура и
композиция пищевых белков, – анатомическая и функциональная состоятельность
эпителиального барьера, – степень конкурентности местного иммунного ответа, что
отражается локальным цитокиновым профилем и экспрессией костимулирующих молекул
на антигенпредставляющих клетках и т.д. Реализация физиологического механизма
толерантности зависит от природы антигена – растворимые белки индуцируют
толерантность, тогда как глобулярные не вызывают толерантности. Один и тот же
антиген может вызывать толерантность или гиперчувствительность в зависимости от
его формы. Введение растворимого мономерного антигена в отсутствие
одновременного вводимого адъюванта обычно приводит к толерантности [Dresser DW,
1961; Vives J, Parks DE , Weigle WO ., 1980]. При введении антигена в
нерастворимой форме или при наличии адъюванта вызывается иммунный ответ, который
связывают с продукцией воспалительных цитокинов (фактор некроза опухоли – TGF– ?
, ИЛ–1, ИЛ–6) и увеличением экспрессиикостимулирующих молекул (B7–1, B7–2, CD40)
на антигенпредставляющих клетках [Pape KA, Khoruts A , Mondino A . et al .,
1997].
Важна доза аллергена, необходимая для формирования толерантности. Низкие дозы
благоприятствуют активации регуляторных Th3–клеток [Chen, Y., 1994; Friedman , A
., and Weiner , H . 1994; Weiner HL & Mayer LF. 1996], а высокие – индуцируют
клональную анэргию [Whitacre, 1991] или делецию [Chen, Y. et al. 1995].
Свидетельством этих иммунологически активных процессов является продукция тех
или иных цитокинов: при низких дозах продуцируются TGF– ? , ИЛ–4, ИЛ–10 [Weiner,
1994], при высоких – снижение продукции ИЛ–2 и экспрессии рецепторов к нему [
Quill , H ., 1996; Melamed , D . & Friedman , A ., 1993; Whitacre , C . C .,
Gienapp , I . E ., Orosz , C . G ., & Bitar , D . M . , 1991]. Начало и
длительность иммунного ответа зависят от момента экспозиции антигена.
Пренатальная экспозиция ? –лактоглобулина у мышей способствует индукции оральной
толерантности к данному антигену, тогда как задержка в его экспонировании
замедляет период, необходимый для развития толерантности. Индукция оральной
толерантности ассоциируется с повышением продукции ИЛ–4 и/или ИЛ–10 и снижением
продукции ИЛ–12. Таким образом, момент первой экспозиции антигена влияет на
развитие толерантности, вероятно, за счет изменения секреции регуляторных
цитокинов [Kato, C. Sato, K. Eishi Y., K. Nakamura, 1999]. В этой связи обращает
на себя внимание безуспешность попыток предупредить развитие аллергии к белкам
коровьего молока и яиц путем элиминации из рациона матери на 3 триместре
продуктов, содержащих эти аллергены [ Falth – Magnusson K , 1987; 1992; Lilja G,
1987]. Эти данные подтверждаются и результатами мета–aнализа [Kramer MS, 2000].
Можно предположить, что пренатальная экспозиция ряда пищевых аллергенов
облегчает формирование оральной толерантности к последним.
Феномен оральной толерантности антиген–специфичен. Вместе с тем TGF– ?
представляет собой мощный неантигенспецифичный супрессорный фактор. Возможно,
неспецифическое действие TGF– ? при индукции оральной толерантности к одному
антигену может способствовать подавлению иммунного ответа и на другие антигены.
Несмотря на то, что развитие оральной толерантности является процессом, в
котором участвует множество клеточных субпопуляций, представляется актуальным
установление клеток, необходимых для формирования этого феномена. Возможными
кандидатами на данную роль являются CD4+ и CD8+ Т–клетки. Толерантность,
вызванная пищевыми антигенами, может быть перенесена клетками и, как правило,
это CD 8+–клетки [ Mowat AM . 1987]. Это позволило предположить, что оральная
толерантность есть результат активации антигенспецифических CD8+ супрессорных T
–клеток [ Lycke N , Bromander A , Ekman L , et al ., 1995; Vistica BP , Chanaud
NP , Felix N , et al ., 1996; Garside P , Steel M , Liew FY et al ., 1995; Chen
Y , 1995; Barone KS, 1995]. Однако во всех указанных исследованиях оральная
толерантность развивалась нормально, несмотря на дефицит CD8+, что
свидетельствует об отсутствии абсолютной необходимости их присутствия для
индукции и поддержании системной толерантности.
Большинство исследователейсчитают, что CD4+ T–клетки (в отличие от спорной
роли CD8+ T–клеток) обязательны для развития оральной толерантности. Известно,
что CD4+ T–клетки могут переносить оральную толерантность in vivo [Chen
Y, Kuchroo VK, Inobe J et al ., 1994; Chen Y , 1995; Hirahara K , Hisatune T ,
Nishijima K , et al ., 1995]. Если CD4+ T–клетки убираются in vivo ,
оральная толерантность отменяется [ Garside P , Steel M , Liew FY , et al .,
1995; Barone KS , 1995]. Особую роль среди CD4+ T–клеток в индукции оральной
толерантности отводят регуляторной субпопуляции Th3. Эти клетки располагаются
внутри Пейровых бляшек и способствуют толерантности, прежде всего путем секреции
TGF– ? и, в меньшей степени, ИЛ–10 и ИЛ–4 [Inobe J, 1998; Hafler DA, 1997;
Fukaura H, 1996]. Среди цитокинов, способствующих формированию оральной
толерантности, наибольшее внимание привлекает TGF– ? . Значительные количества
TGF– ? обнаруживаются в кишечнике в норме [Kim P – H , Kagnoff MF ,. 1990]. Он
синтезируется гемопоэтическими и эпителиальными клетками, важен в регуляции
эпителиального гомеостаза и синтеза в B –клетках IgM и IgA [ Coffman RL , 1989;
Roberts A , Sporn M ., 1993]. TGF – ? и ИЛ–12/ИНФ– ? играют противоположные роли
в иммунной регуляции в кишечнике и имеют решающее значение в индукции слизистого
иммунного ответа и толерантности [ Fishman – Lobell J , Friedman A , Weiner HL ,
1994]. Однако повышение продукции TGF– ? не является обязательной находкой во
всех моделях слизистой толерантности [ Hirahara K , Hisatune T , Nishijima K et
al ., 1995; Mowat AMcI, Ferguson A., 1981] и его роль требует дальнейшего
изучения. Данные, полученные в эксперименте на животных, безусловно, нельзя
механистически переносить на людей. Существует ряд доказательств развития
феномена оральной толерантности и у людей. К непрямым свидетельствам оральной
толерантности у людей относится тот факт, что уязвимая интестинальная слизистая,
которая отделена только монослоем эпителия от огромного количества живого и
мертвого антигенного материала, находящегося в просвете кишечника, в нормальном
состоянии представляет незначительный IgG ответ [Brandtzaeg, P., I . N . Farstad
, F . E . Johansen , et al ., 1999; Brandtzaeg , P ., K. Baklien, K. Bjerke et
al., 1987] и содержит небольшие количества T–клеток с маркерами
гиперреактивности (CD25 или рецепторы для IL–2) [Brandtzaeg, P ., I . N .
Farstad & L . Helgeland , 1998]. Более того, системный IgG ответ к пищевым
антигенам имеет тенденцию к снижению у людей с возрастом [Rothberg, R . M . & R
. S . Farr ., 1965; Scott , H ., T . O . Rognum , T . Midtvedt & P . Brandtzaeg
, 1985; Korenblat , P . E ., R . M . Rothberg , P . Minden & R . S . Farr ,
1968]. Гиперчувствительность к белкам коровьего молока исчезает у 50% к 1 году,
у 70% к 2 годам, у 85% к 3 и у 90–95% к 5 и 10–летнему возрасту [Host A. 1998].
Пищевые протеины, попадая в кровоток, могут достигать различных мест в
организме, в частности, и кожу.Антигены могут вызывать T–клеточный иммунный
ответ, который ведет к обострению атопического дерматита. Пролиферация
лимфоцитов в ответ к пищевым аллергенам положительно коррелирует с продукцией ?
–ИНФ и ИЛ–2, периферическими CD4+ лимфоцитами, индуцируемыми этими антигенами у
детей, которые обострялись при провокационном тестировании [Kondo N, Fukotomi O
& Agata H et al., 1993]. Т–клеточный специфический иммунный ответ к казеину
продемонстрирован у подростков и взрослых, страдавших атопическим дерматитом,
обострявшемся при приеме молока [Werfel T, Ahlers G, Schmidt P , Boeker M ,
1997]. Как уже было отмечено ранее, баланс между толерантностью (супрессией) и
сенсибилизацией зависит от множества факторов: генетических, природы и дозы
антигена, частоты введения аллергена, возраста в момент первой экспозиции
аллергена, состояния иммунной системы при контакте с аллергеном (например, при
вирусной инфекции), диетой матери, поступлениями антигена с грудным молоком [Strobel
S., 2001]. Оральная толерантность предупреждает гиперчувствительность к пищевым
антигенам, и нарушения данного процесса отражаются в иммунопатологических
реакциях. Это показано у больных с целиакией, в эксперименте при развитии
энтеропатии после орального поступления антигена [Mowat AMcI. 1986; Sands BE ,
Podolsky DK ., 1995]. В ряде клинических исследований продемонстрировано
значение нарушений оральной толерантности в патогенезе аутоиммунных заболеваний.
Так, ранняя экспозиция коровьего молока связана с предрасположенностью к
инсулин–зависимому диабету [Kimpimaki T., M. Erkkola , S . Korhonen et al .,
2001].
Среди проявлений аллергии к белкам коровьего молока в первую очередь
необходимо отметить атопический дерматит, крапивницу, отеки Квинке,
аллергическое поражение желудочно–кишечного тракта. Приблизительно треть детей с
атопическим дерматитом имеют подтвержденный элиминационной диетой и
провокационными тестами диагноз аллергии к коровьему молоку. Около 40–50% детей
до года с аллергией к белкам коровьего молока страдают атопическим дерматитом [Novembre
E., Vierucci A., 2001]. Стандартными являются рекомендации по исключению белков
коровьего молока. Однако вследствие широкой распространенности последних сделать
это не всегда возможно. В то же время тяжелые анафилактические реакции нередки.
Необходимо подчеркнуть, что у части детей аллергия к коровьему молоку
сохраняется длительно и это касается больных с высоким уровнем специфических IgE
к данному аллергену [James JM, Sampson HA., 1992], а также наличием
наследственной отягощенности по аллергическим заболеваниям.
У детей первого года жизни с аллергией к белкам коровьего молока повышен риск
ее персистирования, чаще развивается гиперчувствительность к другим продуктам, а
также ингаляционная аллергия к 3–х летнему возрасту [Host A, Halken S., 1990].
Все это свидетельствует о необходимости внедрения новых методов профилактики и
терапии аллергии к белкам коровьего молока. В позиционной статье Европейского
общества детских гастроэнтерологов, гепатологов и нутрициологов и Европейского
общества детских аллергологов и клинических иммунологов (ESPGHAN/ESPACI)
рекомендовано проведение превентивных мероприятий у детей, находящихся на
искусственном вскармливании и имеющих хотя бы одного родителя, страдающего
аллергическими заболеваниями [Host A, Koletzko B , Dreborg S et al ., 1999].
Цель первичной профилактики атопических заболеваний – не допустить развития
сенсибилизации на аллерген. Вторичная профилактика необходима для предупреждения
развития клинических проявлений аллергии в том случае, когда сенсибилизация уже
произошла. Наиболее распространенные пищевые аллергены – белки с молекулярной
массой от 10 до 60 кДа. Аллергенность белков может быть уменьшена с помощью
таких технологичиских процессов, как ферментативный гидролиз и тепловая
обработка. В результате применения этих методов можно получить белки с меньшей
молекулярной массой.
Гидролизованные белки несут на своей поверхности значительно меньшее
количество эпитопов, чем нативные протеины. Аллергенность белка снижается с
уменьшением длины его молекулы. Смеси для искусственного вскармливания,
содержащие гидролизованные протеины, широко используются в европейских странах и
рекомендованы многими экспертными советами [ Host A ., Koletzko B . et al .,
1999; American Academy of Pediatrics, 2000]. Рекомендации по применению
указанных смесей основаны на анализе результатов клинических исследований, в
ходе которых было показано значительное уменьшение заболеваемости бронхиальной
астмой, атопическим дерматитом и пищевой аллергией при кормлении детей смесями
на основе полностью или частично гидролизованных протеинов. В ходе одного из них
[Oldaeus G. et al., 1997], сравнивалась эффективность смесей на основе частично
и полностью гидролизованных протеинов со смесью на основе нативных белков
коровьего молока. К исследованию были привлечены 155 детей с высоким риском
развития аллергических заболеваний, которые были переведены на указанные смеси
после 3–4 месяцев грудного вскармливания. В результате было показано, что у
детей, получавших смеси на основе полностью или частично гидролизованных
протеинов, частота развития атопических заболеваний была значительно ниже, чем у
детей, получавших смесь на основе коровьего молока. Более выраженный эффект был
получен для смеси на основе полностью гидролизованных протеинов. Halken et al.
(2000) исследовали свойства смеси на основе частично гидролизованных протеинов и
двух смесей на основе полностью гидролизованных протеинов, используя выборку,
состоящую из 550 детей с высоким риском развития атопических заболеваний. В ходе
данного двойного слепого рандомизированного исследования дети получали одну из
указанных смесей в течение первых 4 месяцев жизни и не вскармливались грудным
молоком. В возрасте 6, 12 и 18 месяцев никаких различий по частоте развития
астмы, риноконъюнктивита и атопического дерматита в трех исследованных группах
детей обнаружено не было. Однако у детей, получавших смесь на основе частично
гидролизированных протеинов, в возрасте 12 и 18 месяцев была значительно выше
частота развития пищевой аллергии на коровье молоко по сравнению с детьми,
получавшими смесь на основе полностью гидролизованных протеинов.
В случае диетической коррекции при доказанной аллергии к белкам коровьего
молока частичные гидролизаты противопоказаны. Более того, это положение
зафиксировано непосредственно на этикетках продукта, в консенсусах Американской
академии педиатрии, Espghan и Espaci [Giampietro PG, Kjellman NI , Oldaeus g ,
Wouters – Wesseling W , Businco L ., 2001]. В то же время употребление частичных
гидролизатов коровьего молока, вероятно, может вызвать оральную толерантность [Pecquet
S, Bovetto L, 2000]. Поэтому, возможно, последние более эффективны по сравнению
с полными гидролизатами в предупреждении аллергии к белкам коровьего молока. В
частности, на животных было продемонстрировано, что неполные гидролизаты
вызывают толерантность в отличие от полных гидролизатов [Fritsche R, Pahud JJ,
1997]. Безусловно, нельзя экстраполировать на человека экспериментальные
исследования на грызунах. И в настоящее время вопрос о более высокой
результативности неполных гидролизатов в индукции толерантности остается
спорным. Так как оральная толерантность представляет собой физиологический
механизм супрессии иммунного ответа, индукция данного феномена представляется
заманчивой для (может иметь терапевтическое значение) лечения пищевой аллергии.
Среди возможных путей терапевтической коррекции с использованием феномена
оральной толерантности можно выделить следующие: 1) использование
модифицированных белков (антигенов); 2) применение пре– и пробиотиков; 3)
применение различных режимов перорального введения антигена. Экспериментальные
возможности использования феномена оральной толерантности продемонстрированы в
ряде исследований. В частности, на возможность предотвращения
Th2–ассоциированной патологии легких путем индукции оральной толерантности
указано в экспериментальной работе Russo M. (1998). Чрезвычайно интересна
возможность индукции оральной толерантности за счет дополнительных воздействий.
Так, показано, что интестинальная микрофлора может индуцировать и поддерживать
оральную толерантность, что подтверждено на экспериментальных моделях [Gaboriau–Routhiau
V, Moreau MC, 1996]. В отличие от нормальных животных стерильные мыши не
способны к развитию оральной толерантности [Maeda, Y., 2001; Sudo, N., S.–A.
Sawamura, 1997]. Отсутствие оральной толерантности может быть результатом
отсутствия интестинальной микрофлоры. IgE–ответ у стерильных животных может
корригироваться заселением флоры в неонатальный период. При попытке заселения в
более поздние сроки этой коррекции не происходит [Sudo N, Sawamura S, Tanaka K
et al., 1997]. Нарушение заселения интестинальной флоры в неонатальный период
может быть важным шагом в генерации Th–2 клеток и препятствовать формированию
оральной толерантности.
Необходимо подчеркнуть, что оральная толерантность у стерильных мышей может
индуцироваться при введении липополисахарида из грамотрицательных бактерий [Wannemuehler,
1982] моноколонизацией кишечника Bifidobacterium infantis [Maeda, Y.,
2001; Sudo, N., S.–A. Sawamura, 1997] или Escherichia coli [Maeda, Y.,
2001]. В то же время данный эффект не вызывается Clostridium perfringens
или Staphylococcus aureus [Maeda, Y., 2001]. Показано , что
Bifidobacterium lactis и Lactobacillus johnsonii способны
индуцировать оральную толерантность, связанную с гуморальным иммунитетом, а не с
клеточным, тогда как Lactobacillus paracasei индуцирует и поддерживает
клеточный иммунный ответ [Prioult G, 2003]. Lactobacillus paracasei NCC
2461 стимулирует in vitro регуляторные T–клетки к продукции TFG– ния
служила третья группа детей, которые находились на естественном вскармливании.
Результаты достоверно продемонстрировали увеличение количества бифидобактерий в
фекалиях детей, получавших смеси с пребиотиками (р<0,01). На шестой неделе
эксперимента доля бифидобактерий по отношению к общему количеству
микроорганизмов в кишечнике детей составила 65% в опытной группе и 40% в
контрольной группе. Кроме того, видовой состав бифидобактерий в опытной группе
был сходен с таковым у детей, находящихся на грудном вскармливании:
Bifidobacterium Breve, infantis, longum, gallicum, bifidum, adolescentis,
catenulatum .
Штаммы Bifidobacterium lactis / animalis и Bifidobacterium
dentium отсутствовали в кишечнике детей из опытной группы, что полностью
согласуется с нормальным видовым составом бифидобактерий в кишечнике грудных
детей. Данное исследование показало, что при добавлении пребиотиков в смеси для
искусственного вскармливания можно не только индуцировать правильное развитие
кишечной микрофлоры (как бывает в случае кормления пребиотиками с рождения), но
и изменить уже сложившийся состав кишечной микрофлоры. На сегодняшний день
единственной лечебно–профилактической смесью, сочетающей гипоаллергенные и
бифидогенные свойства, является полноценная детская адаптированная смесь
Nutrilon Omneo 1–2 (Nutricia, Голландия).
Литература
1. American Academy of Pediatrics (AAP). Commettee on Nutrition.
Hypoallergenic infant formulas. Pediatr 2000; 106:346–349
2. Aroeira LS, Cardillo F, DeAbuquerque DA, et al. Anti–IL–10 treatment does not
block either the induction or the maintenance of orally induced tolerance to
OVA. Scand J Immunol 1995;41:319–323.
3. Barone KS, Jain SL, Michael JG. Effect of in vivo depletion of CD4+ and CD8+
cells on the induction and maintenance of oral tolerance. Cell Immunol
1995;163:19–29
4. Bauer, A, Ekanayake Mudiyanselage, S, Wiggeralberti, W & Elsner, P (1999)
Oral rush desensitization to milk. Allergy 54 (8), 894–895.
5. Brandtzaeg, P. 1996. History of oral tolerance and mucosal immunity. Ann.
N.Y. Acad. Sci. 778: 1–27.
6. Brandtzaeg, P., K. Baklien, K. Bjerke, et al. 1987. Nature and properties of
the human gastrointestinal immune system. In Immunology of the Gastrointestinal
Tract. K. Miller & S. Nicklin, Eds.: 1–85. CRC Press. Boca Raton, FL.
7. Brandtzaeg, P., I.N. Farstad, F.E. Johansen, et al. 1999. The B–cell system
of human mucosae and exocrine glands. Immunol. Rev. 171: 45–87.
8. Brandtzaeg, P., I.N. Farstad & L. Helgeland. 1998. Phenotypes of T cells in
the gut. Chem. Immunol. 71: 1–26.
9. Bruce, M.G., and Ferguson, A. 1986. Oral tolerance to ovalbumin in mice:
studies of chemically modified and ‘biologically filtered’ antigen. Immunology.
4:627–630.
10. Bruce, M.G., and Ferguson, A. 1986. The influence of intestinal processing
on the immunogenicity and molecular size of absorbed, circulating ovalbumin in
mice. Immunology. 2:295–300.
11. Coffman RL, Lebman DA & Shrader B. Transforming growth factor beta
specifically enhances IgA production by lipopolysaccharide–stimulated murine B
lymphocytes. J Exp Med 1989;170:1039–1044.
12. Chen Y, Inobe J–I, Weiner HL. Induction of oral tolerance to myelin basic
protein in CD8–depleted mice: Both CD4+ and CD8+ cells mediate active
suppression. J Immunol 1995;155: 910–916
13. Chen Y, Kuchroo VK, Inobe J, et al. Regulatory T cell clones induced by oral
tolerance: suppression of autoimmune encephalomyelitis. Science
1994;265:1237–1240
19. Chen Y, Inobe J–I, Kuchroo VK, et al. Oral tolerance in myelin basic protein
T–cell receptor transgenic mice: suppression of autoimmune encephalomyelitis and
dose–dependent induction of regulatory cells. Proc Natl Acad Sci USA
1996;93:388–391.
20. Chen Y, Inobe J–I, Marks R, et al. Peripheral deletion of antigen–reactive T
cells in oral tolerance. Nature 1995;376:177–180.
21. Chen Y, Inobe J–I, Kuchroo VK, et al. Oral tolerance in myelin basic protein
T–cell receptor transgenic mice: suppression of autoimmune encephalomyelitis and
dose–dependent induction of regulatory cells. Proc Natl Acad Sci USA
1996;93:388–391
14. Chen, Y., Kuchroo, V.K., Inobe, J.–I., Hafler, D.A., and Weiner, H.L. 1994.
Regulatory T–cell clones induced by oral tolerance: suppression of autoimmune
encephalomyelitis. Science. 265:1237–1240.
15. Chen, Y. et al.1995. Peripheral deletion of antigen–reactive T–cells in oral
tolerance. Nature. 376:177–180.
16. Dai D, Walker WA. Protective nutrients and bacterial colonization in the
immature human gut. Adv Pediatr 1999;46:353–82.
17. Desvignes C, Bour H, Nicholas JF, et al. Lack of oral tolerance but oral
priming for contact senstivity to dinitrofluorobenzene in major
histocompatibiltiy antigen deficient mice and in CD4+ T cell–depleted mice. Eur
J Immunol 1996;26:1756–1761
18. Dresser DW. Effectiveness of lipid and lipidophilic substances as adjuvants.
Nature 1961;191:1169–1171
19. Ding L, Linsley PS, Huang L–Y, et al. IL–10 inhibits macrophage
costimulatory activity by selectively inhibiting the upregulation of B7
expression. J Immunol 1993;3:1224–1234
20. Hirahara K, Hisatune T, Nishijima K, et al. CD4+ T cells anergized by high
dose feeding establish oral tolerance to antibody responses when transferred in
SCID and nude mice. J Immunol 1995;154:6238–6245;
21. Fiorentino DF, Zlotnik A, Viera P, et al. IL–10 acts on the antigen
presenting cell to inhibit cytokine production by Th1 cells. J Immunol
1991;146:3444–3451
22. Friedman, A., and Weiner, H. 1994. Induction of anergy or active suppression
following oral tolerance is determined by antigen dosage. Proc. Natl. Acad. Sci.
USA. 91:6688–6692.
23. Friedman A & Miller A, et al. Oral tolerance: immunologic mechanisms and
treatment of animal and human organ–specific autoimmune diseases by oral
administration of autoantigens. Annu Rev Immunol 1994;12:809–837.
24. Fritsche R, Pahud JJ, Pecquet S, Pfeifer A. Induction of systemic
immunologic tolerance to beta–lactoglobulin by oral administration of a whey
protein hydrolysate. J Allergy Clin Immunol 1997;100:266–273.
25. Fujihashi, K., T. Dohi, P. D. Rennert, M. Yamamoto, T. Koga, H. Kiyono, and
J. R. McGhee. 2001. Peyer’s patches are required for oral tolerance to proteins.
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 98:3310–3315.
26. Gaboriau–Routhiau V, Moreau MC. Gut flora allows recovery of oral tolerance
to ovalbumin in mice after transient breakdown mediated by cholera toxin or
Escherichia coli heat–labile enterotoxin. Pediatr Res 1996;39:625–9.
27. Garside P, Mowat A. Oral tolerance in disease GUT 1999;44:137–142 Lycke N,
Bromander A, Ekman L, et al. The use of knockout mice in studies of induction
and regulation of gut mucosal immunity. Mucosal Immunology Update 1995;3:1–8 .
28. Garside P, Steel M, Worthey EA, et al. TH2 cells are subject to high–dose
oral tolerance and are not essential for its induction. J Immunol
1995;154:5649–5655
29. Garside P, Steel M, Liew FY, et al. CD4+ but not CD8+ T cells are required
for the induction of oral tolerance. Int Immunol 1995;7:501–504
30. Garside P, Mowat AMcI. Mechanisms of oral tolerance. Crit Rev Immunol
1996;17:119–137 .
31. Giampietro PG, Kjellman NI, Oldaeus G, Wouters–Wesseling W, Businco L.
Hypoallergenicity of an extensive hydrolyzed whey formula. Pediatr Allergy
Immunol 2001;12:83–86.
32. Gibson GR & Roberfroid MB. Dietary modulation of the human colonic
microbiota: introducing the concept of prebiotics. J Nutr 1995;125: 1401–1412.
33. Gnoth MJ, Kunz C, Kinne–Saffran E, Rudloff S. Human milk oligosaccharides
are minimally digested in vitro. J Nutr
2000;130:3014–20.
34. Groux H, O’Garra A, Bigler M, et al. A CD4+ T–cell subset inhibits
antigen–specific T–cell responses and prevents colitis. Nature 1997;389:737–742
35. Jarrett EE. Perinatal influences on IgE responses. Lancet 1984;ii:797–799 .
36. Falth–Magnusson K, Kjellman NIM. Development of atopic disease in babies
whose mothers were receiving exclusion diet during pregnancy: a randomized
study. J Allergy Clin Immunol.1987; 80 :868 –875
37. Falth–Magnusson K, Kjellman NIM. Allergy prevention by maternal elimination
diet during pregnancy: a 5–year follow–up of a randomized study. J Allergy Clin
Immunol.1992; 89 :709 –713
38. Fishman–Lobell J, Friedman A, Weiner HL. Different kinetic patterns of
cytokine gene expression in vivo in orally tolerant mice. Eur J Immunol
1994;24:2720–2724
39. Fukaura H, Kent SC, Pietrusewicz MJ, Khoury SJ, Weiner HL & Hafler DA.
Induction of circulating myelin basic protein and proteolipid protein– specific
transforming growth factor–beta1–secreting Th3 T cells by oral administration of
myelin in multiple sclerosis patients. J Clin Invest 1996;98:70–77.
40. James JM & Sampson HA. Immunologic changes associated with the development
of tolerance in children with cow milk allergy. J Pediatr 1992;56: 371–377..
Halken S, Hansen KS, Jacobsen HP, et al. Comparison of a partially hydrolyzed
infant formula with two extensively hydrolyzed formulas for allergy prevention:
a prospective, randomized study. Pediatr Allergy Immunol 2000; 11:149–161
41. Hafler DA, Kent SC, Pietrusewicz MJ, Khoury SJ, Weiner HL & Fukaura H. Oral
administration of myelin induces antigen–specific TGF–beta 1 secreting T cells
in patients with multiple sclerosis. Ann N Y Acad Sci 1997;835:120–131.
42. Heine W, Zunft HJ, Muller–Beuthow W, Grutte FK. Lactose and protein
absorption from breast milk and cow’s milk preparations and its influence on the
intestinal flora.. Acta Pae–diatr Scand. 1977 Nov;66(6):699–703.
43. Heuvel van den EGHM, Schoterman MHC, Muijs T. Transgalactooligosaccharides
stimulate calcium absorption in postmenopausal women. J Nutr.2000; 130:2938
–2942
44. Hirahara K, Hisatune T, Nishijima K, et al. CD4+ T cells anergized by high
dose feeding establish oral tolerance to antibody responses when transferred in
SCID and nude mice. J Immunol 1995;154:6238–6245
45. Host A. Clinical course of cow’s milk protein allergy and intolerance.
Pediatr Allergy Immunol 1998;56 (Suppl 11): 48–52.
46. HOST A, KOLETZKO B, DREBORG S et al. Dietary products used in infants for
treatment and prevention of food allergy. Joint statement of the ESPACI and
ESPGHAN. Arch Dis Child 1999;81:80–84.
47. Host A & Halken S. A prospective study of cow’s milk allergy in Danish
infants during the first 3 years of life. Allergy 1990;56: 587–596.
48. Husby S, Jensenius JC, Svehag SE, et al. Passage of undergraded dietary
antigen into the blood of healthy adults. Further characterization of the
kinetics of uptake and the size distribution of the antigen. Scand J Immunol
1986;24:447–452.
49. Husby S, Foged N, H?st A, et al. Passage of dietary antigens into the blood
of children with coeliac disease. Quantification and size distribution of
absorbed antigens. Gut 1987;28:1062–1072
50. Inobe J, Slavin AJ, Komagata Y, Chen Y, Liu L & Weiner HL. IL–4 is a
differentiation factor for transforming growth factor–beta secreting Th3 cells
and oral administration of IL–4 enhances oral tolerance in experimental allergic
encephalomyelitis. Eur J Immunol 1998;28:2780–2790.
51. Karlsson, M., S. Lundin, U. Dahlgren, H. Kahu, I. Pettersson, and E. Telemo.
2001. «Tolerosomes» are produced by intestinal epithelial cells. Eur. J. Immunol.
31:2892–2900.
52. Kramer MS. Maternal antigen avoidance during pregnancy for preventing atopic
disease in infants of women at high risk. Cochrane Database Syst Rev.2000; (2)
:CD000133
53. C. Kato, K. Sato, Y. Eishi, K. Nakamura The influence of initial exposure
timing to beta–lactoglobulin on oral tolerance induction. J Allergy Clin Immunol
1999;104:870–8.)
54. Kawanishi H & Strober W. Regulatory T–cells in murine Peyer’s patches
directing IgA–specific isotype switching. Ann N Y Acad Sci 1983;409:243–257.
55. Kawanishi H, Saltzman L & Strober W. Mechanisms regulating IgA
class–specific immunoglobulin production in murine gut–associated lymphoid
tissues. II. Terminal differentiation of postswitch sIgA–bearing Peyer’s patch B
cells. J Exp Med 1983;158:649–669.
56. Kawanishi H & Strober W. T cell regulation of IgA immunoglobulin production
in gut–associated lymphoid tissues. Mol Immunol 1983;20:917–930.
57. Kimpim?ki, T., M. Erkkola, S. Korhonen, et al. 2001. Short–term exclusive
breastfeeding predisposes young children with increased genetic risk of Type I
diabetes to progressive beta–cell autoimmunity. Diabetologia 44: 63–69
58. Kim P–H, Kagnoff MF. Transforming growth factor–1 is a costimulator for IgA
production. J Immunol 1990;144:3411–3416
59. Knol J, Steenbakkers GMA, van der Linde EGM, GroB S, Helm K, Klarczyk M,
Schopfer H, Kafka C. Bifidobacterial species that are present in breast–fed
infants are stimulated in formula fed infants by changing to a formula
containing prebiotics. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2002;34(4):477
60. Kondo N, Fukotomi O & Agata H, et al. The role of T lymphocytes in patients
with food–sensitive atopic dermatitis. J Allergy Clin Immunol 1993;56: 658–668.
61. Korenblat, P.E., R.M. Rothberg, P. Minden & R.S. Farr. 1968. Immune
responses of human adults after oral and parenteral exposure to bovine serum
albumin. J. Allergy 41: 226–235.
62. Lilja G, Dannaeus A, Foucard T, Graff–Lonnevig V, Johansson SGO, Oman H.
Effects of maternal diet during late pregnancy and lactation on the development
of atopic diseases in infants up to 18 months of age: in vivo results. Clin Exp
Allergy.1989; 19 :473 –479
63. Lycke N, Bromander A, Ekman L, et al. The use of knockout mice in studies of
induction and regulation of gut mucosal immunity. Mucosal Immunology Update
1995;3:1–8 .
64. Maeda, Y., S. Noda, K. Tanaka, S. Sawamura, Y. Aiba, H. Ishikawa, H.
Hasegawa, N. Kawabe, M. Miyasaka, and Y. koga. 2001. The failure of oral
tolerance induction is functionally coupled to the absence of T cells in Peyer’s
patches under germfree conditions. Immunobiology 204:442–457.
65. Mayer L, So LP, Yio XY & Small G. Antigen trafficking in the intestine. Ann
N Y Acad Sci 1996;778:28–35.
66. Mayer, L., K. Sperber, L. Chan, et al. 2001. Oral tolerance to protein
antigens. Allergy 56(Suppl. 67): 12–15.
67. Melamed D, Friedman A. Direct evidence for anergy in T lymphocytes tolerized
by oral administration of ovalbumin. Eur J Immunol 1993;23:935–942.
68. Miller A, Lider O, Roberts AB, et al. Suppressor T cells generated by oral
tolerization to myelin basic protein suppress both in vitro and in vivo immune
responses by the release of transforming growth factor after antigen–specific
triggering. Proc Natl Acad Sci USA 1992;89:421–425
69. Mowat AMcI, Weiner HL. Oral tolerance: basic mechanisms and clinical
implications. In: Ogra PL, Mestecky J, Lamm ME, et al eds. Handbook of mucosal
immunology. 2nd edn. San Diego: Academic Press, 1998 .
70. Mowat AMcI. Deletion of suppressor T cells by 2’–deoxyguanosine abrogates
tolerance in mice fed ovalbumin and permits the induction of intestinal
delayed–type–hypersensitivity. Immunology 1986;58:179–184.
71. Mowat AMcI, Ferguson A. Hypersensitivity in the small intestinal mucosa. V.
Induction of cell mediated immunity to a dietary antigen. Clin Exp Immunology
1981;43:574–582
Опубликовано с разрешения администрации Русского
Медицинского Журнала.
|
